Преаналітика крові: як забір, час і температура впливають на результат
Як правильно організувати забір і доставку крові: строки та температури для гематології, коагулології, біохімії й ІФА з посиланнями на дослідження та інструкції.
Поділитися
Професійний огляд TetraMed для лабораторій, пунктів забору та медичних закладів. Джерела перевірено 23.10.2026. Обкладинка та схема — ілюстрації, створені ШІ.
Єдиного строку «кров можна везти стільки-то годин» не існує. Потрібно знати аналіз, тип зразка, добавку в пробірці, час відбору, момент відділення клітин і фактичну температуру. Холодовий ланцюг може допомагати одним дослідженням і бути неправильним рішенням для інших.
Нижче наведено перевірені числові приклади з професійних рекомендацій, інструкцій та каталогів лабораторій. Це не універсальна СОП для всіх реагентів і приладів. Для власного маршруту застосовують актуальну інструкцію виробника — IFU — і правила лабораторії, що приймає матеріал.
1. Два відліки часу: до і після відділення клітин
До центрифугування клітини залишаються в контакті з рідкою частиною крові. Після належного відділення сироватки або плазми умови вже інші. Для наведених нижче сироваткових тестів Mayo передбачає центрифугування, а за потреби й аліквотування, у межах двох годин після забору. Це не дозволяє дві години чекати на будь-який терміновий чи спеціальний аналіз. [10] [11] [12]
Приклад: «сироватка стабільна сім діб у холодильнику» не означає «цільну кров можна сім діб перевозити до центрифуги». Так само строк зберігання зразка після дослідження не є строком його придатності до первинного вимірювання.
Транспорт має завершитися до граничного строку аналізу, залишивши час на приймання, обробку й вимірювання. Максимальна стабільність — не бажана тривалість доставки. Для клінічно термінового тесту навіть формально стабільний зразок не виправдовує затримку.
2. Забір із вени: що потрібно стандартизувати
Орієнтиром для навченого персоналу є рекомендація EFLM–COLABIOCLI. Вона стосується закритих систем венозного забору; конкретні маніпуляції виконують за затвердженим протоколом закладу. [1]
- Ідентифікувати пацієнта щонайменше за двома ідентифікаторами; звірити призначення та підготовку саме до потрібних тестів.
- Обрати дозволені пробірки, перевірити строк придатності та маркувати зразки у присутності пацієнта.
- Виконати гігієну рук, використати рукавички й антисептик; дати обробленій шкірі висохнути.
- Уникати тривалого венозного стазу й повторного інтенсивного стискання кулака; зняти джгут, щойно кров почала надходити до першої пробірки.
- Дотримуватися порядку взяття: гемокультури → цитрат → сироватка → гепарин → EDTA → інгібітори гліколізу, якщо набір призначених тестів передбачає ці пробірки.
- Наповнювати до належної мітки, м’яко перемішувати за інструкцією пробірки; не струшувати.
- Записати час забору й передати матеріал у погоджений маршрут. [1]
Колір кришки сам по собі недостатній: кодування різних виробників може відрізнятися. Перевіряють назву добавки, призначення і необхідне наповнення. Для цитратного зразка критичне співвідношення кров : цитрат = 9 : 1; за гематокриту понад 0,55 л/л потрібне узгоджене з лабораторією коригування об’єму цитрату. [2] [6]
3. Чому закрита система краща за звичайний шприц
Для рутинного забору закриті системи з належними пробірками допомагають зменшувати контакт із кров’ю та отримувати кілька зразків за одну венепункцію. Правильна пробірка забезпечує потрібну добавку та розраховане наповнення. Вакуум не виправляє порушення техніки, але спрощує стандартизацію. [2]
Твердження «шприцами кров брати ніколи не можна» — некоректне. WHO допускає їх використання в певних умовах; існують також закриті системи з ручною аспірацією. Вибір залежить від пацієнта, дослідження і протоколу. Слабке місце звичайного шприца — додаткове перенесення матеріалу: сильне натискання на поршень, надлишковий тиск, контакт і затримка можуть погіршувати якість зразка та безпеку. [2] [7]
Не слід силою проштовхувати кров через голку в пробірку, переливати між пробірками з різними добавками чи «доливати» цитратний зразок із невідомим співвідношенням. Якщо забір шприцом обґрунтований, застосовують сумісний безпечний спосіб перенесення за інструкцією пристрою та СОП. [2] [7]
4. Гематологія: ЗАК, тромбоцити та морфологія
ЗАК виконують із цільної EDTA-крові. Її не центрифугують для звичайного клітинного підрахунку й не заморожують. Доставляти потрібно якнайшвидше; можливе охолодження при затримці має бути дозволене методом. Перед вимірюванням температуру й перемішування відновлюють саме так, як вимагає аналізатор.
| Матеріал / дослідження | Числовий приклад | Як його застосовувати |
|---|---|---|
| ЗАК із диференціацією, цільна EDTA-кров | Mayo CBC: 24 год при кімнатному режимі; 48 год в охолодженому. [3] | Це критерії конкретної лабораторії, а не автоматичний дозвіл для будь-якої моделі. |
| Тромбоцити та клітинні індекси | У дослідженні ADVIA 120 тромбоцити при кімнатній температурі були стабільними лише 12 год. [4] | Не переносити строк стабільності гемоглобіну на весь ЗАК. |
| Мазок для повної оцінки морфології | Традиційний орієнтир — приготування до 4 год; дослідження 2025 року оцінило можливість до 8 год у своєму протоколі. [5] | Без власної перевірки публікація не продовжує чинну СОП. |
Чому цифри різняться? Відрізняються прилади, показники, популяції та критерії прийнятної зміни. Дослідження на ADVIA 120 включало 40 зразків і продемонструвало різну стабільність для клітинних підрахунків, диференціації та мазка. Холодильник не усуває всі морфологічні зміни. [4]
5. Коагулологія: коли холодильник — неправильний маршрут
Для рутинних цитратних зразків до аналізу рекомендації передбачають контрольовані +18…+25 °C. Цільну цитратну кров не слід автоматично ставити в холодильник або на лід: холод може змінювати придатність зразка для гемостазіологічних тестів. [6] [7]
| Аналіз | Час від забору за відкритими рекомендаціями | Важлива умова |
|---|---|---|
| PT / INR | Базово — до 4 год; до 24 год лише за підтвердженої стабільності системи. | Закрита пробірка, контрольована кімнатна температура. [6] |
| aPTT / АЧТЧ | До 4 год. | Не застосовувати виняток PT до АЧТЧ. [6] |
| АЧТЧ для контролю нефракціонованого гепарину | Відділити плазму від клітин у межах 1 год. | Подальший строк — за методом і СОП; загальне правило 4 год не скасовує ранню обробку. [6] |
| Фібриноген | У рутинному маршруті — до 4 год. | Цитратна плазма, умови конкретної системи. [6] |
| Тромбіновий час | У рутинному маршруті — до 4 год. | Та сама базова вимога. [6] |
| D-димер | Базово — до 4 год; до 24 год лише після перевірки стабільності. | Виняток залежить від реагенту та системи. [6] |
Якщо дослідження потребує замороженої плазми, це окремий маршрут: належно підготовлена бідна на тромбоцити плазма, аліквоти, дозволена температура й строк заморожування, транспортування без відтавання. Для багатьох спеціальних тестів перевагу мають низькотемпературні режими; універсальної цифри «місяць у морозилці» немає. Не заморожують цілу цитратну пробірку замість підготовки плазми. [7]
Актуальна редакція стандарту CLSI H21, 6-те видання (2024) присвячена збору, транспортуванню й обробці таких зразків. Наведені тут відкриті рекомендації не слід видавати за дослівну таблицю цього платного стандарту. [21]
6. Біохімія: строки після відділення сироватки
У таблиці нижче йдеться про належно підготовлену, відділену сироватку, а не про кров із клітинами. Це приклади критеріїв названих лабораторій для їхніх методів. Контрольований кімнатний режим — не нагрітий салон автомобіля. Охолоджений режим зазвичай означає +2…+8 °C; точні межі підтверджують за IFU та правилами приймальної лабораторії.
| Аналіз і джерело | Без охолодження, відділена сироватка | Охолоджена сироватка | Примітка |
|---|---|---|---|
| Калій, Mayo KS [11] | Строк у наведеному каталозі не визначений. | 48 год. | Відділити клітини вчасно; гемоліз може спотворити результат. |
| Натрій, Mayo NAS [14] | 14 діб. | 14 діб. | Лише підготовлений матеріал і умови цього каталогу. |
| Креатинін, Cleveland Clinic [16] | 7 діб. | 7 діб. | Приклад для ферментативного методу цієї лабораторії. |
| АЛТ, Mayo ALT [12] | Строк у наведеному каталозі не визначений. | 7 діб. | Не прирівнювати всі ферменти за стабільністю. |
| ЛДГ, Mayo LD [13] | 7 діб; у каталозі це бажаний режим. | 48 год. | Не є дозволом зберігати цільну кров сім діб. |
| Білірубін загальний, Mayo BILIT [10] | 24 год. | 7 діб. | Захищати від світла. |
| Холестерин загальний, Mayo CHOL [15] | Строк у наведеному каталозі не визначений. | 7 діб. | Не переносити автоматично на всі компоненти ліпідограми. |
| Фосфор неорганічний, Mayo PHOS [17] | Строк у наведеному каталозі не визначений. | 7 діб. | Тривалий контакт із клітинами — інший сценарій. |
Позначення «строк не визначений» тут означає, що ми не встановлюємо його довільно. Якщо у вашій IFU наведені інші підтверджені умови, маршрут будують за ними. Наведені довгі строки є межами придатності в конкретному протоколі, а не рекомендацією відкладати клінічно потрібне дослідження.
Систематичний огляд Nygaard та співавторів у Diagnosis (2026) охопив 60 первинних досліджень. Для 28 із 32 досліджених аналітів описано стабільність до восьми годин при +20…+23 °C, але для калію та ЛДГ дані були суперечливими. Це матеріал для оцінки й валідації маршруту, не дозвіл перевозити будь-яку кров вісім годин. [9]
7. Глюкоза: клітини продовжують споживати її після забору
Для глюкози особливо важливе швидке припинення гліколізу. Настанова AACC/ADA рекомендує пробірку зі швидкодійним інгібітором, наприклад гранульованим цитратним буфером. Якщо такого рішення немає, описаний альтернативний підхід — негайне поміщення зразка у суміш льоду й води та відділення клітин протягом 15–30 хвилин. На один лише фторид натрію не слід покладатися як на засіб негайної зупинки гліколізу. [8]
Це спеціальна вимога для відповідного глюкозного маршруту, а не інструкція класти на лід усі пробірки. Звичайна цитратна пробірка для коагулології та пробірка з цитратним буфером для стабілізації глюкози — різні вироби.
8. ІФА: метод не встановлює єдиного строку зберігання
«ІФА» описує принцип вимірювання, але не одну речовину й не одну матрицю. Антитіла, антигени й гормони мають різні вимоги. Так само строк зберігання реагенту не є строком зберігання зразка пацієнта.
| Конкретний приклад | Матеріал і холодовий режим | Без холодильника / за довшої затримки |
|---|---|---|
| Monobind TSH AccuBind ELISA, 325-300 [18] | Відділена сироватка: +2…+8 °C до 5 діб. | Теплий маршрут у наведеній IFU не встановлюємо. За потреби довше: −20 °C до 30 діб; уникати повторного заморожування. |
| Антитіла IgM до кору, ELISA, Georgia Public Health Laboratory [19] | Сироватка: транспортування +2…+8 °C; стабільність 5 діб. | Лабораторія просить доставити протягом 24 год, попри більший строк стабільності. |
| Astra Biotech Anti-TPO ELISA [20] | Сироватка: +2…+8 °C не довше 5 діб. | За довшого зберігання — аліквоти при ≤−20 °C за IFU; уникати повторного заморожування. Довільний строк у теплі не задаємо. |
Умови цих наборів не можна переносити на інший TSH, Anti-TPO чи інфекційну серологію. Перед відправленням уточнюють допустимі матриці, первинну обробку, строки до аналізу, заморожування й кількість допустимих циклів відтавання. Для кожного замороженого аліквоту зберігають простежуваність.
9. Як організувати доставку з холодовим ланцюгом і без нього
- Без охолодження: дозволений, контрольований температурний діапазон; захист від сонця, нагрівання, морозу й сильного струшування. «Без холодильника» не означає «без контролю температури».
- При +2…+8 °C: належний контейнер, підготовлені холодоелементи й контроль температури. Зразки захищають від прямого контакту із замороженим елементом та випадкового замерзання.
- Заморожений матеріал: тільки дозволена й підготовлена матриця; маршрут повинен підтримувати встановлений заморожений стан. Звичайна холодова сумка не дорівнює морозильному режиму.
- Під час приймання: перевіряють ідентифікацію, пробірку, наповнення, час, температурні записи та якість зразка. Сумнівну історію не виправляють простим охолодженням після доставки.
Практичний шаблон для кожного тесту: аналіт → реагент/аналізатор → матриця → пробірка → крайній час обробки → допустимий час до аналізу → температура → світлозахист → критерії відхилення. Саме така таблиця, погоджена з приймальною лабораторією, дає відповідь «скільки можна везти» для вашого закладу.
Читайте також: венозна чи капілярна кров — що обрати для автоматичного аналізатора. Переглянути лабораторне обладнання TetraMed.
Освітній матеріал для професійної аудиторії. Не замінює актуальну IFU, верифікацію/валідацію, клінічне рішення та затверджену СОП. Для газів крові, лактату, амонію, іонізованого кальцію та спеціалізованих коагулологічних тестів потрібні окремі, часто термінові маршрути.
Наукові джерела, професійні рекомендації та інструкції
2. WHO. Guidelines on Drawing Blood, chapters 2–3: best practices and blood-sampling systems, 2010.
10. Mayo Clinic Laboratories. BILIT: Bilirubin, Total, Serum.
11. Mayo Clinic Laboratories. KS: Potassium, Serum.
12. Mayo Clinic Laboratories. ALT: Alanine Aminotransferase, Serum.
13. Mayo Clinic Laboratories. LD: Lactate Dehydrogenase, Serum; test 800058.
14. Mayo Clinic Laboratories. NAS: Sodium, Serum.
15. Mayo Clinic Laboratories. CHOL: Cholesterol, Total, Serum.
16. Cleveland Clinic Laboratories. Creatinine, Serum; ферментативний метод.
17. Mayo Clinic Laboratories. PHOS: Phosphorus (Inorganic), Serum.
18. Monobind. Thyrotropin (TSH) AccuBind ELISA, product 325-300. IFU, section 6.
19. Georgia Department of Public Health. Measles (Rubeola) IgM: specimen storage and transport; ELISA.
